1、一、实验目的和内容目的:以紫外线诱变获得用于酱油生产的高产蛋白酶菌株为例,学习微生物诱变育种的基本操作方法。
2、内容:1.对米曲霉(Aspergillsoryzae)出发菌株进行处理,制备孢子悬液。
(资料图)
3、2.用紫外线进行诱变处理。
4、3.用平板透明圈法进行两次初筛。
5、4.用摇瓶法进行复筛及酶活性测定。
6、二、实验材料和用具米曲霉斜面菌种;豆饼斜面培养基、酪素培养基、蒸馏水、0.5%酪蛋白;三角瓶(300mL、500mL)、试管、培养皿(9cm)、恒温摇床、恒温培养箱、紫外照射箱、磁力搅拌器、脱脂棉、无菌漏斗、玻璃珠、移液管、涂布器、酒精灯。
7、三、操作步骤(一)出发菌株的选择及菌悬液制备1.出发菌株的选择可直接选用生产酱油的米曲霉菌株,或选用高产蛋白酶的米曲霉菌株。
8、2.菌悬液制备取出发菌株转接至豆饼斜面培养基中,30℃培养3~5d活化。
9、然后孢子洗至装有1***.lmol/LpH6.0的无菌磷酸缓冲液的三角瓶中(内装玻璃珠,装量以大致铺满瓶底为宜),30℃振荡30min,用垫有脱脂棉的灭菌漏斗过滤,制成把子悬液,调其浓度为106~108个/mL,冷冻保藏备用。
10、(二)诱变处理用物理方法或化学方法,所用诱变剂种类及剂量的选择可视具体情况决定,有时还可采用复合处理,可获得更好的结果。
11、本实验学习用紫外线照射的诱变方法。
12、1.紫外线处理打开紫外灯(30W)预热20min。
13、取5mL菌悬液放在无菌的培养皿(9cm)中,同时制作5份。
14、逐一操作,将培养皿平放在离紫外灯30cm(垂直距离)处的磁力搅拌器上,照射lmin后打开培养皿盖,开始照射,与照射处理开始的同时打开磁力搅拌器进行搅拌,即时计算时间,照射时间分别为15s、30s、lmin、2min、5min。
15、照射后,诱变菌液在黑暗冷冻中保存1~2h然后在红灯下稀释涂菌进行初筛。
16、2.稀释菌悬液按10倍稀释至10-6,从10-5和10-6中各取出0.lmL加入到酪素培养基平板中(每个稀释度均做3个重复),然后涂菌并静置,待菌液渗入培养基后倒置,于30℃恒温培养2~3d。
17、(三)优良菌株的筛选1.初筛首先观察在菌落周围出现的透明圈大小,并测量其菌落直径与透明圈直径之比,选择其比值大且菌落直径也大的菌落40~50个,作为复筛菌株。
18、2.平板复筛分别倒酪素培养基平板,在每个平皿的背面用红笔划线分区,从圆心划线至周边分成8等份,1~7份中点种初筛菌株,第8份点种原始菌株,作为对照。
19、培养48h后即可见生长,若出现明显的透明圈,即可按初筛方法检测,获得数株二次优良菌株,进大摇瓶复筛阶段。
20、3.摇瓶复筛将初筛出的菌株,接入米曲霉复筛培养基中进行培养,其方法是,称取麦秩85g,豆饼粉(或面粉)15g,加水95~110mL(称为润水),水含量以手捏后指缝有水而不下滴为宜,于500mL三角瓶中装入15~20g(料厚为1~1.5cm),121℃湿热灭菌30min,然后分别接入以上初筛获得的优良菌株,30℃培养,24h后摇瓶一次并均匀铺开,再培养24~48h,共培养3~5d后检测蛋白酶活性。
21、4.蛋白酶的测定方法(1)取样:培养后随机称取以上摇瓶培养物1g,加蒸馏水100mL,(或200mL),40℃水浴,浸酶1h,取上清浸液测定酶活性。
22、另取lg培养物于105℃烘干测定含水量。
23、(2)酶活性测定:30℃pH7.5条件下水解酪蛋白(底物为0.5%酪蛋白),每分钟产酪氨酸1μg为一个酶活力单位。
24、计算公式为:(A样品OD680nm值-A对照OD680nm值)×K×V/t×NK:标准曲线中光吸收为“1”时的酪氨酸微克数;V:酶促反应的总体积;t:酶促反应时间(min);N:酶的稀释倍数。
25、5.谷氨酸的检测此项检测也是酱油优良菌株的重要指标之一。
26、检测培养基:豆饼粉:麸夫=6:4,润水75%,121℃湿热灭菌30min。
27、谷氨酸测定:于以上培养基中加入7%盐水(W/V),40~45℃水浴,水解9d后过滤,以滤液检测谷氨酸含量(测压法)。
28、四、注意事项1.紫外线照射时注意保护眼睛和皮肤。
29、2.诱变过程及诱变后的稀释操作均在红灯下进行,并在黑暗中培养。
30、五、实验报告1.试列表说明高产蛋白酶菌株的筛选过程和结果。
31、2.你认为以上的筛选方法有什么优缺点,如何改进?六、问题和思考1.试述紫外线诱变的作用机理及其在具体操作中应注意的问题。
32、2.为什么在诱变前要把菌悬液打散和培养一段时间?注:筛选菌株数的计算若按突变率为0.01计算,则一次筛选可取250—300个菌落,第一次筛选后可多选几株高产株,而二级筛选为重点阶段,其最适量可参考以下计算方法:如初筛菌株数为200株,二次筛选欲选株数为2株,则二级应选(200×2)1/2,为20株,这样的数量选择,使有可能从较少的数量中获得相对较多的优良菌株。
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